ATP 유전 미생물 활성 검사 시약 키트

미생물 배양에 기초한 검측 방법은 여러 해 동안 유전 미생물의 검측을 주도해 왔으며, 현행 업계 표준과 각 유전 기업 내부 표준은 대부분 절적 희석법을 기초로 유전 채출수 살균제의 살균 효과를 평가한다 (예를 들면: 승리 유전은 주로 SY/T 5757-2010 유전 채출수 처리용 살균제 기술 요구를 참조한다).2세대 ATP 광선법과 같은 다른 도구는ATP 유전 미생물 활성 검사 시약 키트(삼린산 아데노신) 및 qPCR(정량중합효소사슬반응)도 배양법의 검사주기(7일)가 길고 실제 미생물 개체군에 대한 추정부족(특정 미생물을 제외한 99.9% 다른 미생물 무시)의 단점을 잘 보완할 수 있는 현장과 실험실 평가에서 보편화되고 있다.

2세대 ATP 광선법과 평판법의 상관성

다음 그림과 같은 실험은 미생물 농도가 다른 기름 함유 샘플(빨간색)과 기름 함유 샘플(파란색)을 각각 선택하여 평판법과 ATP법을 테스트한 후 2가지 방식으로 분석한 결과를 그래프로 만들어 선형 관련성을 검증하고 R2 값을 계산했다.그림에서 우리는 ATP와 LB 배양 평판법 사이의 R2가 모두 0.9보다 크다는 것을 알 수 있는데, 이는 두 분석 방법의 관련성이 매우 강하다는 것을 보여준다.

특히 2세대 ATP 발광법은(ATP 유전 미생물 활성 검사 시약 키트)1세대 ATP 접근 방식과 비교했을 때 크게 향상된 3가지 기능:

· 시료의 분석 부피를 20mL로 늘리고 분석의 안정성 및 검사 한계(LLD) 향상

· 간섭을 방지하기 위해 시료에서 유기물과 TDS를 씻어내는 사전 처리 단계가 추가되었습니다.

· 매번 분석하기 전에 효소 활성 교정을 실시하여 효소 활성 손실이 결과에 미치는 영향을 방지하였다

2세대 ATP 발광법, 절적 희석법과 qPCR의 결과 비교

다음 그림은 유전에서 실제로 채취한 물 샘플에서 미생물을 분석한 세 가지 다른 방법을 보여준다. 6차례 분석한 샘플은 모두 같은 샘플링 지점에서 나온 것으로 샘플링 간격은 1~2월마다 총 1년이 걸린다.qPCR법의 결과는 세균총수와 고세균수의 총화이다.절적 희석법은 SRB, APB 및 GHB 판독의 합계입니다.ATP 발광법은 총 미생물 개수입니다.그 결과 절적 희석법은 미생물의 검사 결과 (예: 샘플 5) 에 큰 오도를 일으킬 수 있지만 ATP 발광법과 qPCR 두 가지 방법으로 얻은 결과는 매우 일치합니다.

다음 표는 미국 바넷 셰일 Barnett Shale이 채굴한 실제 생산 데이터로, 8개의 서로 다른 생산 우물에서 나온 우물의 샘플을 미생물 분석했다.이 중 ATP 발광법과 묘기 희석법은 모두 현장에서 완성됐다. qPCR법은 실험실에서 여과막에 가로막힌 미생물 샘플을 분석한 결과 물 샘플 1mL당 미생물 개수로 흰색은 정상, 노란색은 높고, 빨간색은 높았다.우리는 ATP와 qPCR법의 결과가 기본적으로 일치한다는 것을 알 수 있는데, 절적 희석법은 지나치게 높거나 (채유정 1) 너무 낮을 수 있는 추정 미생물 수가 존재한다.

요약

유전 채출수에서 2세대 ATP 발광법(ATP 유전 미생물 활성 검사 시약 키트)와 qPCR법의 미생물 분석 결과는 절적희석법의 결과와 잘 일치할 뿐만 아니라 절적희석법의 검측 시간이 길고 실제 미생물 종군에 대한 추정 부족을 보완할 수 있어 절적희석법의 부족함을 잘 보완할 수 있다.세 가지 방법 모두 자신의 특징을 갖추고 있으며, 여러 가지 방법의 결합 사용은 유전에서 미생물의 위협을 더욱 * 관리하는데 도움을 줄 수 있다.

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